胰蛋bai酶（Trypsin）試劑盒說明書

分光光度法 50 管 48 樣

胰蛋bai酶試劑盒

正式測定前務(wù)必取 2-3 個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定測定意義：

胰蛋bai酶選擇性水解變性蛋白質(zhì)中由賴氨酸或精an酸的羧基所構(gòu)成的肽鏈，是一種重要的消化酶。此外，胰蛋bai酶還廣泛應(yīng)用于膿胸、血胸、外科炎癥、潰瘍、創(chuàng)傷性損傷等所產(chǎn)生的局部水腫、血腫及膿腫等的輔助治療。

測定原理：

胰蛋bai酶催化水解TAME 的酯鍵，釋放出的游離羧基與反應(yīng)體系中的氫氧化鈉發(fā)生中和反應(yīng)，導(dǎo)致溶液的pH 值降低，以苯fen紅為指示劑，測定溶液在 555nm 處吸收值的變化，可以快速測得胰蛋bai酶活性數(shù)據(jù)。胰蛋bai酶在一定范圍內(nèi)與 555nm 處吸收值的降低呈良好的線性關(guān)系。

組成：

自備儀器和用品：

紫外可見分光光度計、1ml 玻璃比色皿、臺式離心機、水浴鍋、可調(diào)式移液器、研缽、冰和蒸餾水。

粗酶液提取：

1、組織樣品：

按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液）冰浴勻漿，10000g，4℃離心 10min，取上清，即粗酶液。

測定步驟：

1、分光光度計預(yù)熱 30min 以上，調(diào)節(jié)波長至 555nm，蒸餾水調(diào)零。

工作液的配制：臨用前根據(jù)用量按照試劑一（V）：試劑二（V）：蒸餾水（V）：試劑三（V）=1 ml：1 ml：5.4 ml：0.4 ml 的比例充分混合。（注意：現(xiàn)用現(xiàn)配，用多少配多少，在空瓶中配制，試劑盒中帶有 4 個空瓶）

3. 吸取25μl樣本，加入975 μl工作液，混勻后立即測定，記錄555nm下1min時的吸光值A(chǔ)1和2min時的吸光值A(chǔ)2。計算△A=A1-A2

注意：如果△A小于0.005，可將反應(yīng)時間延長到5min。如果△A大于0.5，體系迅速變色，可將樣本用提取液稀釋后測定（建議稀釋10倍），計算公式中乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù)。

胰蛋bai酶活性計算公式：

使用石英比色皿測定的計算公式如下

按蛋白濃度計算

活性單位定義：室溫下每毫克蛋白質(zhì)每分鐘催化 555nm 處吸光值減少 1 為 1 個酶活單位。胰蛋bai酶（U/mg prot）= △A ×V 反總 ÷（Cpr×V1）÷T

=40×△A ÷Cpr

按樣本質(zhì)量計算

活性單位定義：室溫每克組織每分鐘催化 555nm 處吸光值減少 1 為 1 個酶活單位。胰蛋bai酶（U/g 鮮重）= △A×V 反總÷（W×V1÷V2）÷T

=40×△A ÷W

Cpr：粗酶液蛋白質(zhì)濃度（mg/ml），需要另外測定；W：組織質(zhì)量（g）；V1：加入反應(yīng)體系中粗酶液體積（ml），25 μl=0.025 ml；V2：粗酶液總體積（ml），1 ml；V 反總：反應(yīng)總體積，1 ml；T：反應(yīng)時間（min），1 min。

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